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实验动物的处死方法点击次数:3168 更新时间:2010-01-27

缓冲液

使用液

浓贮存液(每升)

Tris-乙酸(TAE)

1×:0.04mol/L Tris-乙酸

50×:242g Tris碱

 

0.001mol/L EDTA

57.1ml冰乙酸

 

 

100ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)

Tris-磷酸(TPE)

1×:0.09mol/L Tris-磷酸

10×:10g Tris碱

 

0.002mol/L EDTA

15.5ml85%磷酸(1.679g/ml)

 

 

40ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)

Tris-硼酸(TBE)a

0.5×0.045mol/L Tris-硼酸

5×:54g Tris碱

 

0.001mol/L EDTA

27.5硼酸

 

 

20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)

碱性缓冲液b

1×:50mmol/L NaOH

1×:5ml 10mol/L NaOH

 

1mmol/L EDTA

2ml 0.5mmol/L EDTA(pH8.0)

Tris-甘氨酸c

1×:25mmol/L Tris

5×:15.1g Tris

 

250mmol/L 甘氨酸

94g 苷氨酸(电泳级)(pH8.3)

 

0.1% SDS

50ml 10% SDS(电泳级)

缓冲液

使用液

浓贮存液(每升)

Tris-乙酸(TAE)

1×:0.04mol/L Tris-乙酸

50×:242g Tris碱

 

0.001mol/L EDTA

57.1ml冰乙酸

 

 

100ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)

Tris-磷酸(TPE)

1×:0.09mol/L Tris-磷酸

10×:10g Tris碱

 

0.002mol/L EDTA

15.5ml85%磷酸(1.679g/ml)

 

 

40ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)

Tris-硼酸(TBE)a

0.5×0.045mol/L Tris-硼酸

5×:54g Tris碱

 

0.001mol/L EDTA

27.5硼酸

 

 

20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)

碱性缓冲液b

1×:50mmol/L NaOH

1×:5ml 10mol/L NaOH

 

1mmol/L EDTA

2ml 0.5mmol/L EDTA(pH8.0)

Tris-甘氨酸c

1×:25mmol/L Tris

5×:15.1g Tris

 

250mmol/L 甘氨酸

94g 苷氨酸(电泳级)(pH8.3)

 

0.1% SDS

50ml 10% SDS(电泳级)

缓冲液

使用液

浓贮存液(每升)

Tris-乙酸(TAE)

1×:0.04mol/L Tris-乙酸

50×:242g Tris碱

 

0.001mol/L EDTA

57.1ml冰乙酸

 

 

100ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)

Tris-磷酸(TPE)

1×:0.09mol/L Tris-磷酸

10×:10g Tris碱

 

0.002mol/L EDTA

15.5ml85%磷酸(1.679g/ml)

 

 

40ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)

Tris-硼酸(TBE)a

0.5×0.045mol/L Tris-硼酸

5×:54g Tris碱

 

0.001mol/L EDTA

27.5硼酸

 

 

20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)

碱性缓冲液b

1×:50mmol/L NaOH

1×:5ml 10mol/L NaOH

 

1mmol/L EDTA

2ml 0.5mmol/L EDTA(pH8.0)

Tris-甘氨酸c

1×:25mmol/L Tris

5×:15.1g Tris

 

250mmol/L 甘氨酸

94g 苷氨酸(电泳级)(pH8.3)

 

0.1% SDS

50ml 10% SDS(电泳级)

实验动物的处死方法很多,应根据动物实验目的、实验动物品种(品系)、以及需要采集标本的部位等因素,选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法,都应遵循安乐死的原则。

安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下,使实验动物短时间无痛苦地死亡。

处死实验动物时应注意,首先要保证实验人员的安全;其次要确认实验动物已经死亡,通过对呼吸、心跳、瞳孔、神经反射等指征的观察,对死亡作出综合判断;再者要注意环保,避免污染环境,还要妥善处理好尸体。

一、颈椎脱臼处死法

此法是将实验动物的颈椎脱臼,断离脊髓致死,为大、小鼠zui常用的处死方法。操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并将其提起,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及颈部,右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方,造成颈椎脱臼,脊髓与脑干断离,实验动物立即死亡。

二、断头处死法

此法适用于鼠类等较小的实验动物。操作时,实验人员用左手按住实验动物的背部,拇指夹住实验动物右腋窝,食指和中指夹住左前肢,右手用剪刀在鼠颈部垂直将鼠头剪断,使实验动物因脑脊髓断离且大量出血死亡。

三、击打头盖骨处死法

主要用于豚鼠和兔的处死。操作时抓住实验动物尾部并提起,用木锤等硬物猛烈打击实验动物头部,使大脑中枢遭到破坏,实验动物痉挛并死亡。

四、放血处死法

此法适用于各种实验动物。具体做法是将实验动物的股动脉、颈动脉、腹主动脉剪断或剪破、刺穿实验动物的心脏放血,导致急性大出血、休克、死亡。

犬、猴等大动物应在轻度麻醉状态下,在股三角做横切口,将股动脉、股静脉全部暴露并切断,让血液流出。操作时用自来水不断冲洗切口及血液,既可保持血液畅流无阻,又可保持操作台清洁,使实验动物急性大出血死亡。

五、空气栓塞处死法

处死兔、猫、犬常用此法。向实验动物静脉内注入一定量的空气,形成肺动脉或冠状动脉空气栓塞,或导致心腔内充满气泡,心脏收缩时气泡变小,心脏舒张时气泡变大,从而影响回心血液量和心输出量,引起循环障碍、休克、死亡。空气栓塞处死法注入的空气量,猫和兔为20~50ml,犬为90~160ml。

六、过量麻醉处死法

此法多用于处死豚鼠和家兔。快速过量注射非挥发性麻醉药(投药量为深麻醉时的30倍),或让动物吸入过量的乙醚,使实验动物中枢神经经过过度抑制,导致死亡。

七、毒气处死法

让实验动物吸入大量CO2等气体而中毒死亡。


 

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